更新时间:2025-12-02
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摘要:在医学真菌学研究领域,明确病原真菌的致病性是理解其发病机制、评估治疗策略及开发新药的核心。利用动物模型进行体内感染实验,被视为验证真菌致病性的“金标准”。本方案旨在阐述如何系统性地建立并评估真菌动物感染模型,其中霉菌培养箱在关键步骤中扮演着的角色,用于量化真菌负荷与评估感染进程。
一、 研究目标与核心思路
本研究旨在通过标准的动物感染模型,评估目标真菌菌株(如临床分离株、基因敲除/过表达株)的体内致病能力强弱。核心思路是:将真菌以特定方式接种于易感动物,随后通过一系列终点指标(生存率、组织载菌量、病理损伤),客观、定量地比较不同菌株的毒力差异。整个过程高度依赖于霉菌培养箱对回收真菌的准确培养与计数。

二、 动物感染模型的建立
实验动物选择:
常用模型:小鼠是泛使用的模型动物。根据研究目的,可选择免疫正常的野生型小鼠,或免疫缺陷小鼠(如中性粒细胞减少症模型、Cyclophosphamide处理小鼠),后者对条件致病真菌(如曲霉、念珠菌)更为敏感,能模拟免疫功能低下宿主的严重感染。
感染方式与途径:
全身播散性感染模型:通过尾静脉注射一定浓度的真菌孢子或酵母细胞悬液。此模型用于研究真菌的全身性定植、扩散能力及对抗真菌药物的全身疗效。
侵袭性肺曲霉病模型:通过鼻腔吸入或气管内接种孢子悬液。这是研究见侵袭性真菌病——侵袭性肺曲霉病的经典模型。
皮肤或皮下感染模型:在剃毛皮肤表面涂抹或进行皮下注射,用于研究皮肤癣菌或皮下真菌病的致病过程。
三、 致病性评估的核心指标与方法
感染模型建立后,需通过以下多维度的指标进行系统评估:
生存率分析:最直接、力的终点指标。
方法:设立对照组(如PBS注射)与实验组(接种不同菌株),每日观察并记录动物的生存状态。
数据分析:绘制Kaplan-Meier生存曲线,使用Log-rank检验比较不同组间的生存率差异。生存期显著缩短的组别,其感染菌株的毒力更强。
组织器官真菌载量定量分析:关键量化指标,依赖霉菌培养箱完成。
方法:在感染后设定的时间点(如24h, 48h, 72h, 7天)处死动物,无菌采集目标器官(肺、肝、脾、肾、脑等)。
匀浆与培养:将组织称重后加入无菌PBS进行匀浆。取适量匀浆液进行系列稀释,涂布于选择性固体培养基(如含氯霉素的SDA平板)上。
霉菌培养箱的作用:将涂布后的平板置于霉菌培养箱中,在适宜真菌生长的温度(通常25-30℃或37℃,视菌种而定)下培养24-72小时。
结果判定:计数平板上的菌落形成单位,并根据稀释倍数和器官重量,计算每克组织中的CFU数量。载菌量越高,表明真菌在该组织中的增殖和定植能力越强。
组织病理学分析:直观显示真菌-宿主相互作用的形态学指标。
方法:取部分组织用福尔马林固定,石蜡包埋后切片。
特殊染色:采用过碘酸希夫染色(PAS)或六胺银染色(GMS),这些染色能特异性地将真菌细胞壁染成红色或黑褐色,使其在组织背景下清晰可见。
镜下观察:在光学显微镜下评估:
真菌侵袭程度:菌丝/孢子在组织中的分布范围、深度。
菌丝形态:观察体内菌丝形态是否与体外培养一致。
宿主反应:炎症细胞浸润类型(中性粒细胞、巨噬细胞等)、组织坏死、肉芽肿形成等病理变化。
四、 霉菌培养箱在本研究中的核心价值
在整个研究链条中,霉菌培养箱并非仅是一个培养工具,而是实现定量化、标准化评估的基石:
精准定量:通过提供稳定、均一的培养环境,确保从组织中回收的真菌能够可靠地形成可见菌落,使得CFU计数准确可靠,这是比较不同菌株或不同处理组间毒力差异的客观数据基础。
标准化操作:所有组织样本在相同的培养条件下处理,避免了因培养条件波动引入的误差,保证了实验结果的重复性与可比性。
结论:综合利用动物模型与霉菌培养箱等关键技术,建立系统的体内致病性研究方案,是解析真菌毒力因子、评估新型抗真菌药物或宿主导向疗法效能的黄金法则。其中,霉菌培养箱在将“感染”这一生物学过程转化为可精确测量的“数据”(CFU/g组织)方面,发挥着不可替代的核心作用,为真菌致病机理研究与防控策略开发提供了坚实的技术支撑。
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